Insegnamento BIOCHIMICA VETERINARIA E BIOLOGIA MOLECOLARE

Corso
Medicina veterinaria
Codice insegnamento
GP005362
Curriculum
Comune a tutti i curricula
Docente
Elisabetta Chiaradia
CFU
5
Regolamento
Coorte 2018
Erogato
2018/19
Tipo insegnamento
Obbligatorio (Required)
Tipo attività
Attività formativa integrata

BIOCHIMICA VETERINARIA SISTEMATICA E COMPARATA

Codice GP005392
CFU 2
Docente Luca Avellini
Docenti
  • Luca Avellini
Ore
  • 20 ore - Luca Avellini
Attività Base
Ambito Discipline della struttura, funzione e metabolismo delle molecole di interesse biologico
Settore BIO/10
Tipo insegnamento Obbligatorio (Required)
Lingua insegnamento Italiano
Contenuti Comprensione di come i processi metabolici siano integrati e regolati attraverso I sistemi di trasduzione del segnale.Specializzazioni metaboliche dei diversi tessuti; in particolare di mammella, fegato e rumine.Biochimica dei processi digestivi nelle specie monogastriche e poligastriche.
Testi di riferimento Nelson DL, Cox MM - Principi di Biochimica. Zanichelli, Bologna.A.P. Mariani, A. Podestà - Biochimica e Biotecnologia del Rumine - Piccin.
Obiettivi formativi L'obiettivo del corso è fornire agli studenti le basi per poter comprendere le specializzazioni metaboliche dei diversi distretti dell'organismo e le principali differenze metaboliche che sussistono tra le diverse specie animali in modo, successivamente, da poter meglio comprendere le diverse esigenze nutrizionali e la gestione delle patologie in maniera specie-specifica.Tali conoscenze e abilità verranno certificate dal superamento dell'esame.
Prerequisiti Per comprendere gli argomenti trattati, lo studente deve possedere conoscenze indispensabili attestate dal superamento dell’esame di Biochimica Generale.
Metodi didattici Il corso è organizzato nel seguente modo:- Lezioni frontali (17 ore) in aula su tutti gli argomenti del corso.- n° 2 esercitazioni pratiche (totale 3 ore/studente) organizzate come didattica cooperativa. Gli studenti saranno divisi in 4 gruppi di massimo 20 studenti.- Gli studenti saranno divisi in quattro gruppi (massimo 20 studenti)
Altre informazioni Il docente renderà disponibile on-line il materiale utilizzato per le lezioni.Il docente si rende disponibile (previ accordi) anche al di fuori degli orari di ricevimento ufficiali (Mar e Gio 13-14) per spiegazioni sugli argomenti del programma.
Modalità di verifica dell'apprendimento Gli studenti potranno avvalersi di una prova scritta facoltativa, alla fine del corso, secondo le seguenti modalità: una domanda aperta (scelta da un elenco pubblicato in precedenza su Unistudium), della durata di un'ora. Lo studente che scegliesse di sostenere l'esonero suddetto dovrà aver superato l’esame di Biochimica Generale. L’esito positivo verrà mantenuto valido fino all’appello invernale dell’AA in corso. Lo studente che non abbia utilizzato con profitto l’esonero, potrà ripetere la prova scritta nei giorni indicati dal calendario ufficiale degli esami o, a scelta, sostenere l’esame in forma orale. L'esito della prova verrà valutato in trentesimi e sarà successivamente mediato con la valutazione ottenuta nel modulo di Biologia Molecolare.
Programma esteso Presentazione del corso e richiami di biochimica generale. Descrizioni delle principali specializzazioni metaboliche dei diversi tessuti e organi. ( 1,5 ore).Digestione, assorbimento e trasporto di carboidrati e lipidi nelle specie monogastriche. Lipoproteine: struttura sintesi e ruolo, biosintesi del colesterolo. (2,5 ore)Digestione proteine dei monogastrici, ruolo e specificità delle proteasi. Assorbimento degli amminoacidi e overview sul loro destino metabolico. Ammine biogene. (2 ore).Introduzione al metabolismo ruminale. Caratteristiche strutturali dei polissacaridi vegetali; cellulosa, emicellulosa, sostanze pectiche. Fase idrolitica della digestione ruminale dei carboidrati. Fase ossidativa della digestione ruminale dei glucidi: glicolisi anaerobia, via di Entner-Doudoroff , via fosfochetolasica, via del pentoso fosfato. Fase riduttiva del metabolismo glucidico ruminale-Destino dell’acido piruvico: produzione di acetato, propionato, butirrato, lattato, formiato, e H2 metanogenesi. (6 ore)Bioidrogenazione: reazioni e significato, gli isomeri coniugati dell’Ac. Linoleico (CLA). (1 ora)Metabolismo dei composti azotati nelle specie poligastriche - Vie di escrezione dell'azoto, sintesi acido Urico (2 ore)Ghiandola mammaria: sintesi del lattosio e ruolo dell’alfa-lattoalbumina (1 ora).Detossificazioni epatiche e stress ossidativo (1 ora)

BIOLOGIA MOLECOLARE

Codice GP005393
CFU 3
Docente Elisabetta Chiaradia
Docenti
  • Elisabetta Chiaradia
Ore
  • 30 ore - Elisabetta Chiaradia
Attività Base
Ambito Discipline della struttura, funzione e metabolismo delle molecole di interesse biologico
Settore BIO/11
Tipo insegnamento Obbligatorio (Required)
Lingua insegnamento Italiano
Contenuti Introduzione, Struttura degli acidi nucleici, Replicazione del DNA, ,Riparazione del DNA, Trascrizione del DNA e sua regolazione, Sintesi proteica, Estrazione acidi nucleici, Sequenziamento del DNA, DNA ricombinante, PCR, Fingerprinting, Microarray, Cenni di metodologie proteomiche.
Testi di riferimento Dai geni ai genomi. Dale - von Schantz.
EdiSES Edizioni Scientifiche ed Universitarie
Edizione: II / 2008

David L Nelson, Michael M Cox
I principi di biochimica di Lehninger
Quinta edizione-2010
ZANICHELLI

oppure

James D Watson, Tania A Baker, Stephen P Bell, Alexander Gann, Michael Levine, Richard Losick
Biologia molecolare del gene
Sesta edizione- 2009
Zanichelli.
Obiettivi formativi Lo studenente dovrà dimostare di aver acquisito conoscenza dei meccanismi molecolari di base per la trasmissione dell’informazione genetica, la sua espressione e regolazione; Dovrà inoltre dimostare di aver compreso i principi teorico pratici delle principali metodologie applicate allo studio di DNA, RNA e Proteine.

Durante le lezioni pratiche lo studente dovrà dimostare di avere acquisito un background teorico pratico e la manualità necessaria per poter lavorare in laboratorio con campioni biologici e con acidi nucleici
Metodi didattici Il corso è organizzato nel seguente modo:

Lezioni frontali in aula su tutti gli argomenti del corso

Esercitazioni in laboratorio: esecuzione di un esperimento di estrazione di acidi nucleici- elettroforesi di DNA

Esercitazione in aula informatica per l'utilizzo di database . Per le esercitazioni gli studenti saranno divisi in quattro gruppi ( massimo 20 studenti)
Programma esteso Introduzione al corso- Cenni storici. Le scienze OMICHE: genomica, trascrittomica e proteomica (1 ora).
Struttura degli acidi nucleici- nucleotidi, basi azotate. Legame fosfodiestere e scheletro covalente di DNA E RNA. Superavvolgimento del DNA, nucleosoma, ruolo degli istoni. Temperatura di melting. Strutture e ruoli dell'RNA. Il genoma e le sequenze non codificanti (2 ore).
Replicazione del DNA: La replicazione semiconservativa, le proteine coinvolte nelle duplicazione, sintesi della catena lenta, le DNA polimerasi, elicasi e ligasi. La trascrittasi inversa. Sistemi di controllo della duplicazione. Sistemi di riparazione del DNA (2 ore).
Trascrizione del DNA: Definizione di gene e sua struttura. RNA polimerasi di procarioti e degli eucarioti: differenze strutturali e funzionali. Fase di inizio, allungamento e terminazione della trascrizione. (2 ore).
Le modificazioni post-trascrizionali dell'RNA: capping, le code di poli(A). Splicing, Editing. Maturazione del tRNA. Regolazione post trascrizionale: stabilità e emivita dell'mRNA, ruolo dei miRNA e dei siRNA. Struttura RNA maturo, sequenze UTR (2 ore)..
Sintesi proteica - Il codice genetico: la decifrazione e le sue caratteristiche. L'RNA transfer: struttura tridimensionale. Aminoacil-tRNA sintetasi e Attivazione degli amminoacidi, interazioni codon-anticodon. I ribosomi: composizione, struttura. Fase d'inizio di allungamento e di terminazione della traduzione. ruolo dei fattori proteici . Modificazioni post traduzionali. (2 ore).
Regolazione dell'espressione genica-. Differenza tra eucarioti e procarioti. Promotore, sequenze upstream, attivatori e repressori. Operon del lattosio e del triptofano. Fattori di trascrizione, enhancers Interazione fattori di trascrizione e DNA. Modificazioni conformazionali e strutturali dei fattori di trascrizione e segnali cellulari. Ormoni steroidei e regolazione dell'espressione genica. mRNA e responsive element. (2 ore).
Estrazione acidi nucleici. concetto di resa e purezza, composizione tampone di estrazione. Strategie di estrazione e kit commerciali, valutazione quantità dell’estratto. (2 ore).
Elettroforesi: principi e applicazioni per lo studio degli acid nucleici. (1 ora).
PCR: Principi. Le tre fasi: temperature, tempi, peculiarità. Primer: caratteristiche, utilizzo software online per disegno (cenni). qPCR: principi e sonde. (2 ore).
Sequenziamento del Dna- Sequenziamento di Sanger, Fingerprinting: Enzimi di restrizione. fasi di esecuzione e applicazioni (3 ore)
Microarray: principi e applicazioni ( 30 mins)- Cenni di Clonaggio
(1 ora)
Proteomica: cenni, SDSPAGE, elettroforesi bidimensionale, immunoblotting. (2.5 ore)
Data base: alcuni esempi (1 ora)
Lezione pratica: Estrazione di acidi nucleici da linfociti di diverse specie animali- Elettroforesi del DNA estratto e misura spettrofotometrica della sua concentrazione. Come disegrare un primer ( 4 ore)
Condividi su